Частотно-резонансный метод деконтаминации от микоплазмы клеточной линии Hela

Одной из актуальных проблем современной вирусологии является приготовление диагностических тест-систем и вакцинных препаратов, большинство из которых готовится на клеточных культурах. Одним из требований ВОЗ, предъявляемых к клеточным субстратам, является отсутствие в них контаминантов различной этиологии. Наиболее частой причиной контаминации клеток является микоплазма-инфекция (от 60-90% клеточных культур заражены этими микроорганизмами). Несмотря на многочисленные работы, посвященные применению различных видов антибиотиков, сульфаниламидов, нитрофурановых соединений и препаратов фторхинолового ряда, 100% эффективного средства до сих пор не найдено.

В ранее проведенных нами исследованиях на моделях вирусов гриппа А, герпеса I типа и гепатита С выявлено подавление репродукции этих вирусов в экспериментах in vitro и in vivo при применении аппарата "МИНИ-ЭКСПЕРТ-ДТ" фирмы "ИМЕДИС".

Это позволило нам провести ряд опытов с использованием этого аппарата для деконтаминации опухолевой клеточной линии Hela хронически инфицированной (++++) микоплазмой.

Эксперименты ставили в 2-х вариантах

В 1-м воздействие осуществляли на монослой клеток программами F44 и F45 с интенсивностью 100 усл. ед. по 3 мин. на каждую, а также с целью регенерации клеток Hela применили частоты 97,5 Гц и 69,5 Гц.

Во 2-м варианте резонансно-частотное воздействие осуществляли на суспензию клеток также с интенсивностью 100 усл. ед. теми же частотами, но по 2 мин. на каждую и с инверсией.

В результате экспериментов выявлено, что в 1-м варианте опытов при резонансно-частотном воздействии ростовая активность клеток снизилась в 2 раза (ИП = 1,29) по сравнению с контрольной клеточной линией Hela, не контаминированной микоплазмой (ИП = 4,16). Наблюдалось также уменьшение количества жизнеспособных клеток (85%) по сравнению с контролем (99%). Эти клетки были не способны к дальнейшему пассированию.

Во 2-м варианте опыта после электромагнитного воздействия на контаминированные клетки Hela также наблюдалось снижение индекса пролиферации в 2 раза (ИП = 2,0) при контрольных значениях ИП = 4,16. Однако в этих опытах жизнеспособность клеток оставалась такой же, как и в контроле (99%). Клетки не содержали микоплазм и не утратили способности к дальнейшему пассированию, хотя и более замедленному. Максимальный рост клеток отмечался на 5 сутки по сравнению с контролем, где полный монослой клеток образовывался на 3 сутки.

Таким образом, резонансно-частотное воздействие на клетки Hela, контаминированные микоплазмами с помощью программам F44 и F45 с инверсией привело к подавлению размножения микоплазм в культуре клеток. Применение частот 97,5 Гц + 69,5 Гц, направленных на регенерацию клеток Hela, способствовало сохранению жизнеспособности этой культуры и способности их пассирования.

С нашей точки зрения, эти исследования перспективны и требуют дальнейшего продолжения и подтверждения на моделях других клеточных линий.